动物疾病模型是生物医学研究的重要工具，而造模剂的选择直接决定模型的可靠性和可重复性。造模剂可以通过在实验动物体内模拟疾病的病理生理过程，为研究疾病机制、筛选干预手段及评估效果提供高效的平台。AbMole可为科研用户提供涵盖神经退行性疾病、心血管疾病、消化系统疾病、呼吸系统疾病、代谢性疾病及炎症模型等多个类别的造模剂。

一、基因调控模型造模剂

Tamoxifen（他莫昔芬，AbMole，M7353）是Cre-loxP条件性基因敲除小鼠模型中最常用的诱导剂。Tamoxifen（CAS No.：107761-42-2）与Cre-ERT2融合蛋白结合后，诱导Cre重组酶从细胞质向细胞核转位，实现对靶基因的时空特异性编辑^[12]。在小鼠模型中，Tamoxifen通过灌胃或腹腔注射给药（常用剂量75–200 mg/kg，连续3-5天），可在特定组织或细胞类型中诱导高效的基因重组，广泛应用于发育生物学、神经科学及肿瘤模型构建。

二、神经退行性疾病模型造模剂

β-Amyloid peptide (1-42)（AbMole，M1555）是阿尔茨海默病（AD）研究中最常用的造模剂之一。Aβ1-42是β-淀粉样前体蛋白（APP）经β-分泌酶和γ-分泌酶切割后产生的最具神经毒性的片段，其聚集形成寡聚体和纤维状沉积是AD的核心病理特征^[1]。在小鼠和大鼠模型中，Aβ1-42通过侧脑室或海马注射给药（常用剂量1–10 nmol），可诱导学习记忆障碍、神经元凋亡及突触可塑性损伤，模拟AD的认知功能下降和神经病理改变^[1]。

MPTP（1-甲基-4-苯基-1,2,3,6-四氢吡啶，AbMole，M9049）是大/小鼠帕金森病（PD）模型的经典造模剂。MPTP（CAS No.：23007-85-4）本身无神经毒性，但可通过血脑屏障进入中枢神经系统，经胶质细胞单胺氧化酶B（MAO-B）代谢为活性产物MPP⁺，后者被多巴胺能神经元通过多巴胺转运体（DAT）摄取，抑制线粒体复合物I功能，诱导氧化应激和神经元死亡^[2]。在小鼠和猴模型中，MPTP通过腹腔或静脉注射给药（常用剂量10–30 mg/kg，连续5–7天），可选择性破坏黑质致密部多巴胺能神经元，模拟PD的运动障碍和病理特征^[2]。

三、心血管疾病模型造模剂

Isoprenaline（异丙肾上腺素，AbMole，M3186）是β-肾上腺素受体非选择性激动剂，广泛用于大/小鼠心肌缺血/梗死模型的构建。Isoprenaline（CAS No.：51-30-9）通过持续激活β-受体，引起心率加快、心肌耗氧量增加及冠状动脉痉挛，最终导致心肌细胞缺血性损伤和坏死^[3]。在大鼠、小鼠和家兔模型中，Isoprenaline通过皮下或腹腔注射给药（常用剂量5–20 mg/kg，单次或连续2天），可诱导心电图ST段抬高、血清心肌酶（CK-MB、cTnI）升高及心肌组织病理学改变，模拟急性心肌梗死的表现^[3]。

Deoxycorticosterone acetate（脱氧皮质酮醋酸盐，AbMole，M2619）是盐皮质激素受体激动剂，用于大/小鼠高血压模型的构建。DOCA（CAS No.：56-47-3）通过促进肾远曲小管和集合管对钠离子的重吸收及钾离子的排泄，引起水钠潴留和血容量增加，同时增强血管对儿茶酚胺的敏感性，导致外周血管阻力升高^[4]。在大鼠和小鼠模型中，DOCA通过皮下注射给药（常用剂量5–10 mg/kg，每周一次，连续4–6周），联合高盐饮食可诱导稳定的高血压状态，伴有心肌肥厚和肾功能损伤^[4]。

四、消化系统疾病模型造模剂

Dextran sulfate sodium（葡聚糖硫酸钠，DSS，AbMole，M9443）是大/小鼠溃疡性结肠炎/肠炎模型的标准造模剂。DSS（CAS No.：9011-18-1）通过破坏肠道上皮屏障、激活天然免疫反应及改变肠道菌群组成，诱导结肠黏膜炎症和溃疡形成^[6]。在小鼠和大鼠模型中，DSS通过饮水给药（常用浓度1%–5%，连续5–10天），可诱导动物体重下降、便血、结肠缩短及组织学炎症评分升高^[5]。

Indomethacin（吲哚美辛，AbMole，M3466）是非甾体抗炎剂（NSAID），可通过抑制环氧合酶（COX）活性减少前列腺素合成，破坏胃黏膜的保护屏障，是大/小鼠胃溃疡/胃炎模型的常用造模剂^[5]。Indomethacin（CAS No.：53-86-1）在大鼠和小鼠模型中通过灌胃或腹腔注射给药（常用剂量10–20 mg/kg，单次或连续3–5天），可诱导胃黏膜糜烂、出血及炎症细胞浸润，模拟胃病特征^[6]。

Ceruletide（雨蛙素，AbMole，M9316）是胆囊收缩素（CCK）的类似物，多用于大/小鼠急性胰腺炎模型的构建。Ceruletide（CAS No.：17650-98-5）通过过度刺激胰腺腺泡细胞的CCK受体，引起胰酶过早激活、腺泡细胞自噬障碍及炎症级联反应，导致胰腺组织水肿、坏死和炎症浸润^[7]。在小鼠和大鼠模型中，Ceruletide通过腹腔注射给药（常用剂量20–50 μg/kg，每小时一次，连续6–12小时），可诱导血清淀粉酶和脂肪酶升高、胰腺组织病理损伤及全身炎症反应^[7]。

Taurocholic acid sodium（牛磺胆酸钠，AbMole，M5990）也是大/小鼠重症急性胰腺炎模型的经典造模剂。牛磺胆酸钠（CAS No.：345909-26-4）通过胰胆管逆行注射（常用浓度3%–5%，0.1–0.3 mL），可引起胰管上皮损伤、胰酶反流及胰腺组织自身消化，模拟胆源性重症急性胰腺炎的病理过程^[8]。

五、呼吸系统疾病模型造模剂

Bleomycin（博莱霉素，AbMole，M2100）是大/小鼠肺纤维化模型的经典造模剂。Bleomycin（CAS No.：9041-93-4）https://www.abmole.cn/products/bleomycin-sulfate.html通过抑制DNA合成，诱导DNA单链和双链断裂，引起肺泡上皮细胞损伤和炎症反应，随后激活成纤维细胞增殖和胶原沉积，导致肺组织结构重塑和功能丧失^[9]。在小鼠和大鼠模型中，Bleomycin通过气管内注射或雾化吸入给药（常用剂量1–5 mg/kg，单次），可诱导进行性肺纤维化，表现为肺顺应性下降、羟脯氨酸含量升高及组织学纤维化评分增加^[9]。

六、代谢性疾病模型造模剂

Dexamethasone（地塞米松，AbMole，M2176）是糖皮质激素受体激动剂，广泛用于大/小鼠胰岛素抵抗/肥胖模型的构建。Dexamethasone（CAS No.：50-02-2）主要通过促进脂肪分解、抑制葡萄糖摄取及诱导胰岛素信号通路抵抗，引起高血糖、高胰岛素血症和脂肪重新分布^[10]。在小鼠和大鼠模型中，Dexamethasone通过皮下注射或灌胃给药（常用剂量0.5–2 mg/kg，每日一次，连续5–14天），可诱导空腹血糖升高、葡萄糖耐量异常及肝脏和肌肉胰岛素抵抗^[10]。

七、泌尿与肾脏疾病模型造模剂

Bovine serum albumin（牛血清白蛋白，BSA，AbMole，M9616）https://www.abmole.cn/products/bovine-serum-albumin.html是肾小球肾炎模型的常用造模剂。BSA（CAS No.：9048-46-8）作为一种外源性蛋白抗原，通过诱导免疫复合物沉积于肾小球基底膜，激活补体系统和炎症细胞浸润，导致肾小球滤过屏障损伤和蛋白尿^[12]。在大/小鼠模型中，BSA通过尾静脉或腹腔注射给药（常用剂量10–50 mg/kg，隔日一次，连续4–6周），可诱导肾小球系膜细胞增生、基底膜增厚及免疫复合物沉积，模拟人类膜性肾小球肾炎的病理特征^[11]。

八、炎症模型造模剂

Lipopolysaccharide（脂多糖，LPS，AbMole，M9524）是大/小鼠全身炎症或者发热模型最常用的造模剂。LPS是革兰氏阴性菌细胞壁外膜的主要成分，通过结合Toll样受体4（TLR4）激活MyD88依赖和TRIF依赖的信号通路，诱导大量促炎因子（TNF-α、IL-1β、IL-6）和I型干扰素的产生^[12]。在小鼠、大鼠和家兔模型中，LPS通过腹腔或静脉注射给药（常用剂量1–10 mg/kg），可诱导体温升高、血压下降、全身炎症反应综合征（SIRS）及多器官功能障碍^[12]。

Freund's complete adjuvant（弗氏完全佐剂，FCA，AbMole，M25524）是佐剂性关节炎模型的经典造模剂。FCA由灭活分枝杆菌与矿物油乳化而成，通过缓慢释放抗原并持续激活Th1细胞和巨噬细胞，诱导强烈的细胞免疫和迟发型超敏反应，导致关节滑膜炎症和软骨破坏^[13]。在大/小鼠模型中，FCA通过足跖或皮内注射给药（常用剂量0.1–0.5 mL/只，单次），能诱导后足肿胀、关节畸形及全身性关节病变，模拟类风湿性关节炎的病理表现^[13]。

参考文献及鸣谢

[1] Hardy, J. A.; Higgins, G. A. Alzheimer's disease: the amyloid cascade hypothesis. Science 1992, 256 (5054), 184–185.

[2] Langston, J. W.; Ballard, P.; Tetrud, J. W.; et al. Chronic Parkinsonism in humans due to a product of meperidine-analog synthesis. Science 1983, 219 (4587), 979–980.

[3] Rona, G. Catecholamine cardiotoxicity. Journal of Molecular and Cellular Cardiology 1985, 17 (4), 291–306.

[4] Hall, J. E.; Granger, J. P. Renal hemodynamics and arterial pressure during chronic intrarenal adrenergic blockade. American Journal of Physiology 1983, 245 (1), F22–F30.

[5] Wirtz, S.; Neufert, C.; Weigmann, B.; et al. Chemically induced mouse models of intestinal inflammation. Nature Protocols 2007, 2 (3), 541–546.

[6] Wallace, J. L. Prostaglandins, NSAIDs, and gastric mucosal protection: why doesn't the stomach digest itself? Physiological Reviews 2008, 88 (4), 1547–1565.

[7] Lampel, M.; Kern, H. F. Acute interstitial pancreatitis in the rat induced by excessive doses of a synthetic cholecystokinin analogue. American Journal of Pathology 1977, 87 (3), 529–550.

[8] Schmidt, J.; Lewandrowsi, K.; Fernandez-del Castillo, C.; et al. Histopathology and pathophysiology of taurocholate-induced acute pancreatitis in rats. Pancreas 1992, 7 (4), 412–418.

[9] Moore, B. B.; Hogaboam, C. M. Murine models of pulmonary fibrosis. American Journal of Physiology-Lung Cellular and Molecular Physiology 2008, 294 (2), L152–L160.

[10] Nicod, N.; Giusti, V.; Besse, C.; et al. Metabolic adaptations to dexamethasone-induced insulin resistance in healthy volunteers. Obesity Research 2003, 11 (5), 625–631.

[11] Beutler, B.; Rietschel, E. T. Innate immune sensing and its roots: the story of endotoxin. Nature Reviews Immunology 2003, 3 (2), 169–176.

[12] Hao X, Xing X, Song S. Application of lipopolysaccharide in establishing inflammatory models. Int J Biol Macromol. 2024 Nov;279(Pt 4):135371.

[13] Hendriksen C, Boersma W. Freund's complete adjuvant: an effective but disagreeable formula. Res Immunol. 1992 Jun;143(5):478-83; discussion 572. 

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