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小鼠尾静脉注射技巧与避坑指南_ MedChemExpress (MCE)

已有 264 次阅读 2026-9-14 10:36 |系统分类:科研笔记

“Wait!住手啊!你确定那真的是静脉?”小鼠尾静脉注射实验,求生手册,来了!

Section.01

实验工具与材料准备

1. 针头大小小鼠常用 27-30 G (越细越温柔,别用粗针吓鼠鼠!);

2. 注射量小鼠单次一般 5-25 mL/kg (超量易栓塞/死亡);

3. 固定器毛巾包裹 + 尾夹 (或用恒温箱/固定盒,让鼠放松);

4. 注射样本处理 药液要过滤 (0.22 μm 滤膜)、无气泡,细胞悬液要吹打均匀 (防成团!)。

Section.02

如何让血管“现形”?

1. 物理法:用 40-45℃ 温水泡鼠尾 (或烤灯照),血管扩张会更明显;

2. 化学法:涂少量肝素钠/酒精以扩张血管;

3. 视觉法:黑暗环境下,从尾巴下方打光,血管反光更清晰。

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图 1. 使用红外线灯扩张尾静脉[1]

(A) 癌细胞静脉注射示意图;(B) 应用红外光扩张尾静脉;(C) 拉伸小鼠尾巴时,可见一条紫色直线;(D) 针尖顺利插入尾静脉。

Section.03

实操“找手感”:

三条静脉一条动脉,

看准再下手!

 

血管识别:记住“三静一动”

三条静脉:背侧 (最粗)、两侧 (较细,新手慎选);

一条动脉:腹侧 (颜色偏红,搏动明显,绝对不能扎!)。

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图 2.小鼠“三静一动”示意图[2]

大鼠尾部横截面解剖图,静脉为蓝色,动脉为红色,尾部两侧的静脉相对较粗,便于采血。

 

注射步骤 (保姆级分解)

小鼠保定:

可使用鼠类固定器或毛巾等保定小鼠身体,只漏出尾巴;也可将小鼠进行麻醉处理。

消毒/暴露血管:

酒精消毒并用温水泡/照灯等方法暴露血管。

进针:

针头斜面朝上 (进针角度为 15-30°),轻轻挑起皮肤,如见回血则成功扎进静脉;

推药:

缓慢推注 (约 1 秒/10 μL),观察尾巴是否鼓包,如鼓包则表明漏液,应该立即停止。

拔针:

轻压止血 (用棉球按住针孔 3 秒)。

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图 3.对单只小鼠进行连续血液微量采样[3]

小鼠被用一个圆筒固定住,以便能够自由伸展尾巴,使用 30 号针头进行小鼠尾静脉采血

Section.04

细胞栓塞:

一个常被忽略的“致命风险”

为啥会栓塞?

尾静脉注射进的是血液循环,如果推入的细胞悬液中存在细胞团块,这些肉眼看不见的小团体会随血流进入右心→肺动脉→肺毛细血管网。

由于肺毛细血管网的管径极其狭窄 (通常只有 5-10 μm),这些细胞团块无法通过,会直接卡在肺部微血管中,形成机械性栓塞。这会导致小鼠气体交换受阻、发生急性肺循环障碍,甚至造成小鼠死亡!

 

解决方案

(1) 细胞悬液:PBS 洗 2 次 + 轻柔吹打 20 次 (用 1 mL 枪吹,别用移液管猛吸);

(2) 过滤:用 40μm 细胞筛过滤 (去掉团块);

(3) 注射前:离心 (低速,500 rpm/5 min) 去掉大团。

Section.05

是否成功?

判断&注意事项

成功判断

(1) 尾巴无鼓包 (鼓包 = 漏到皮下);

(2) 推药顺畅 (阻力小,无“噗嗤”声);

(3) 小鼠无挣扎/死亡 (注射后 10 分钟内活泼如常)。

 

避坑注意 

(1) 别反复扎同一位置,易血肿;

(2) 针头别斜插,易刺穿血管;

(3) 药液温度接近体温,冰的会刺激血管痉挛。

表 1. 常见问题排查与答疑

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Section.06

常见应用场景

 

生物大分子递送

核酸药物 (如 siRNA)、质粒 DNA 及脂质纳米颗粒 (LNP) 等生物大分子的体内递送研究常采用小鼠尾静脉注射给药。

近年研究表明,经尾静脉注入包裹核苷修饰 mRNA 的脂质纳米颗粒,可实现肝脏的高效且相对特异性递送——在合适剂量下可使约 70% 的原代肝细胞和约 40% 的库普弗细胞检测到目标蛋白表达,为遗传性肝病、肝靶向蛋白替代及 mRNA 疫苗等研究提供了有力工具。

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图 4.mRNA-LNP IV 注射液的实验设计及肝细胞特异性和转染效率的分析[4]

 

活体成像与示踪

在生物医学研究中,小鼠尾静脉注射结合活体成像技术已成为药物筛选、纳米材料评估、细胞示踪及疾病机制研究的重要工具。

通过静脉途径将荧光探针、纳米颗粒、细胞或放射性示踪剂引入循环系统,研究者能够实时、非侵入性地观察其在体内的分布和代谢。

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抗肿瘤药物与靶向治疗测试

向尾静脉直接注射肿瘤细胞是建立实验性肺转移模型的经典方法。例如,将食管鳞状癌细胞或乳腺癌细胞注入尾静脉,这些细胞会经过血液循环首先到达肺部,形成转移灶。该模型可用于研究肿瘤细胞的转移能力和评估抗转移药物的疗效。

此外,还可通过静脉给药来评估大分子抗体、细胞治疗 (如 CAR-T) 及新型抗肿瘤药物的体内疗效。

图片                            图 6. 尾静脉注射 MDA-MB-231 细胞,构建乳腺癌肺转移模型[6]

药代动力学 (ADME) 研究

尾静脉注射是小鼠药代动力学研究中最为常用的给药途径之一,因其操作简便、药物吸收迅速且能实现 100% 的生物利用度。通过这一技术,科研人员能够精确评估候选药物在体内的吸收、分布、代谢和排泄 (ADME) 特性。

 

全身性疾病&感染模型构建

通过注射特定病原体或致病因子,建立全身性感染或特定系统疾病的模型。如在败血症模型构建中,可通过尾静脉注射脂多糖 (LPS),模拟革兰氏阴性菌感染引起的全身性炎症反应。

图片                                                  图 7. 注射 LPS,建立败血症模型[7]

产品推荐:

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 参考文献:

[1] Giannou AD, et al. Protocol for orthotopic single-lung transplantation in mice as a tool for lung metastasis studies. STAR Protoc. 2023 Dec 15;4(4):102701. 

[2] Wang S, et al. Spinal cord injury modeling: from modeling to evaluation using rats as examples. Front Neurol. 2025 Jun 16;16:1573779. 

[3] Jilek JL, et al. Effects of MicroRNA-34a on the Pharmacokinetics of Cytochrome P450 Probe Drugs in Mice. Drug Metab Dispos. 2017 May;45(5):512-522. 

[4] Everton E, et al. Transient yet Robust Expression of Proteins in the Mouse Liver via Intravenous Injection of Lipid Nanoparticle-encapsulated Nucleoside-modified mRNA. Bio Protoc. 2021 Oct 5;11(19):e4184.

[5] Li J, et al. Stable, Bright, and Long-Fluorescence-Lifetime Dyes for Deep-Near-Infrared Bioimaging. J Am Chem Soc. 2022 Aug 10;144(31):14351-14362. 

[6] Lin Q, et al. Multi-organ metastasis as destination for breast cancer cells guided by biomechanical architecture. Am J Cancer Res. 2021 Jun 15;11(6):2537-2567. Erratum in: Am J Cancer Res. 2025 Nov 25;15(11):5054-5057. 

[7] Ouyang W, et al. A citrullinated histone H3 monoclonal antibody for immune modulation in sepsis. Nat Commun. 2025 Aug 12;16(1):7435.

 



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