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恭喜!IF 12.5 的材料科学一区期刊《Chemical Engineering Journal》已成功发表!

已有 317 次阅读 2026-7-27 15:22 |系统分类:论文交流

文章已发表在SCI期刊 Chemical Engineering Journal(最新SCI期刊分区:材料科学1区Top IF 12.5),评论可以沾沾好运~标题为:Reprogramming lipid metabolism and morphology engineering in Yarrowia lipolytica for algae-free, high-titer production of esterified astaxanthin

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要点

  • ScDGAT2-1 能够实现虾青素凤蝶红素的特异性酯化。

  • 脂质代谢工程促进酯化虾青素的生物合成。

  • DGA1/PAH1 缺失与脂滴靶向使酯化虾青素产量达到 40.5 mg/L。

  • 酯化虾青素滴度创下历史新高(1137.2 mg/L)。

  • 形态工程(MHY1 缺失)提升了生物反应器性能。

    摘要

    虾青素是一种强效抗氧化剂,而酯化虾青素具有更高的稳定性和生物利用度,使其更适用于化妆品、营养保健品和水产养殖领域。然而,工业供应目前主要依赖雨生红球藻(Haematococcus pluvialis)的培养,这需要特定的地理和气候条件。本研究在解脂耶氏酵母Yarrowia lipolytica)中开发了首个系统性的代谢工程策略,以实现酯化虾青素的高水平、无藻类参与的生产。

    我们鉴定出来源于裂壶藻Schizochytrium sp.)的二酰基甘油酰基转移酶 ScDGAT2-1 是一种多功能酶,既能酯化虾青素及其中间产物凤蝶红素,同时也支持三酰甘油的合成。为了缓解脂肪酰辅酶A的竞争,通过敲除内源性二酰基甘油酰基转移酶基因 DGA1 和磷脂酸磷酸水解酶基因 PAH1 来限制三酰甘油的合成,其效果优于过表达胞内脂肪酶基因 TGL4 以增强三酰甘油水解的策略,使酯化虾青素占总虾青素的比例提升至 39.6%。

    为进一步减少中间产物的积累,我们将 ScDGAT2-1 靶向定位至脂滴,在空间上将虾青素的生物合成与酯化反应解耦,从而使虾青素在总类胡萝卜素中的比例提高至 64%。

    此外,删除一个 C2H2 型锌指蛋白 Mhy1p 的编码基因,可降低胞内脂肪酶基因 TGL3 和 TGL4 的表达,并改善发酵性能,在 5 L 生物反应器的高密度培养条件下实现了更高、更稳定的酯化虾青素生产。最终,5 L 补料分批发酵获得了 1137.2 mg/L 的酯化虾青素和 1613.5 mg/L 的总虾青素,这是迄今报道的异源酯化虾青素的最高滴度。

    综上所述,这些结果构建了一个可放大的酵母平台,并为酯化虾青素的工业化无藻生产提供了一种可持续的范式。

    研究结果(部分)

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    图1. 酯化虾青素生物合成途径示意图

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    图3. ScDGAT2–1拷贝数和脂质通量调控对虾青素生物合成及脂质积累的影响。

    (a)含有1–3个ScDGAT2–1拷贝的菌株中虾青素的产量。EA:酯化虾青素;FA:游离虾青素。

    (b)含有1–3个ScDGAT2–1拷贝的菌株中三酰甘油(TAG)含量和细胞干重(DCW)。

    (c)菌株YAE4和YAE5的游离与酯化虾青素产量曲线。

    (d)酯化虾青素合成相关代谢途径示意图。实线表示直接的酶促反应;虚线代表多步途径。

    数据表示为平均值 ± 标准差(n = 3个生物学重复)。

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    图5. 通过缺失PAH1并过表达前体生物合成相关酶来优化碳通量,以及MHY1缺失的影响。

    (a)菌株YAE12–16的游离与酯化虾青素产量曲线。EA:酯化虾青素;FA:游离虾青素。数据表示为平均值 ± 标准差(n = 3个生物学重复)。

    (b)影响酯化虾青素合成的代谢途径示意图。实线表示直接的酶促反应;虚线代表多步途径。PA:磷脂酸。

    总结

    本研究构建了一系列工程化解脂耶氏酵母Yarrowia lipolytica)菌株,用于异源合成酯化虾青素ASTA)。来源于裂壶藻(Schizochytrium sp.)的二酰基甘油酰基转移酶 ScDGAT2–1 已被证实能够酯化凤蝶红素和 ASTA,但不能酯化玉米黄质,表明其对底物的特异性要求是含有羰基官能团。转化 ScDGAT2–1 的菌株 YAE1 可产生 33.7 mg/L 的酯化 ASTA。然而,进一步增加 ScDGAT2–1 的拷贝数会使碳通量转向三酰甘油(TAG)的合成而非酯化 ASTA,这表现为细胞干重(DCW)增加而酯化 ASTA 产量下降。敲除 DGA1 和 PAH1 则将碳通量重新导向酯化 ASTA,并释放乙酰辅酶 A 用于类胡萝卜素生物合成,使酯化 ASTA 的产量提高至 40.5 mg/L。将 ScDGAT2–1 靶向定位至脂滴可减少中间产物的积累,增强产物分配,并可能缓解反馈抑制。由于 MHY1 敲除增强了某些发酵特性并稳定了酯化 ASTA 的积累,其缺失提高了类胡萝卜素的总合成量,表明形态工程对发酵过程具有有益影响。

    总之,本研究是在解脂耶氏酵母中异源合成酯化 ASTA 的首个系统性代谢工程研究。通过重新平衡碳通量和调控关键基因的表达,成功构建了一株有前景的工业菌株。在 5 L 生物反应器发酵中,酯化 ASTA 产量达 1137.2 mg/L,总 ASTA 产量达 1613.5 mg/L,最大生产速率分别为 9.5 mg/L/h(酯化 ASTA)和 13.4 mg/L/h(总 ASTA)。这些结果代表了迄今报道的异源合成酯化 ASTA 的最高产量和生产速率。

    作者致谢

    本研究得到国家重点研发计划(2023YFA0914403)、上海市合成生物学重点项目(24HC2810800)的资助,并部分受到发酵工程教育部重点实验室开放课题(202409FE04)和上海交通大学概念验证计划(SJTU-PoC计划,SJTU-PoC-2025)的资助。感谢LetPubwww.letpub.com.cn)提供的语言润色和投稿前专家评审服务。

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