脂质纳米颗粒，做药物递送的小伙伴一定不陌生！遥想当年，小 M 也是看着同门拿着仪器挤膜，做表征，来来回回……本期就给大家整理下关于脂质纳米颗粒那些事儿~

 

01脂质纳米颗粒 LIPID NANOPARTICLES

脂质纳米颗粒 (Lipid Nanoparticle，LNP) 是一种脂质类物质组成的纳米粒子，具有均匀脂质核心，广泛用于小分子和核酸药物的递送 (详见往期：药物如何递送 ？脂质纳米颗粒！)。

LNP 通常由可电离阳离子脂质 (Ionizable lipids)、胆固醇、PEG 脂质 (PEGylated lipids)、结构脂质 (辅助脂质) 四个部分构成，一个典型的 LNP 包含多种组分以及包载内容 (Payload)。

图 1. 脂质纳米颗粒基本组成^[1]。

 

表 1. 脂质纳米颗粒组成、特点及应用^[1-8]。

 

脂质纳米颗粒递送系统的优势：

• 低免疫原性、具有良好的生物相容性和安全性

• 稳定性强，在体内不易变形

• 核酸包封率高

• 细胞穿透性强、转染效率高

• 内体逃逸能力强

 

02 如何制备？  HOW TO PREPARE?

脂质纳米颗粒 (LNP) 的制备依赖于自组装的能力，带负电荷的核酸和带正电荷的脂质之间产生静电络合，LNP 通过脂质组分之间的疏水作用和范德华作用相互生长。

LNP 的制备可以通过多种方式进行，例如脂质囊泡的挤出、脂质膜的再水化、纳米沉淀、微流体混合，一般的制备方式是将水和脂质成分快速混合。小 M 为大家整理了高分文献中常用的制备方案，大家可以根据自己的实验目的进行脂质搭配比例上的调整~

具体操作 (供参考^[9])LNP 制剂的制备 

• 天平称取 15 mg DLin-MC3-DMA (MC3)，然后加入 200 μL 纯乙醇溶解 MC3，使其浓度达到 75 mg/mL;

• 天平称取 10 mg DSPC，然后加入 1.0 mL 纯乙醇溶解，终浓度为 10 mg/mL;• 天平称取 10 mg 胆固醇，加入 1.0 mL 纯乙醇溶解，终浓度为 10 mg/mL;• 天平称取 10 mg DMG-PEG，然后加入 1.0 mL 纯乙醇溶解，终浓度为 10 mg/mL;• 将 13.3 μL DLin-MC3-DMA 溶液、24.6 μL DSPC 溶液、46.4 μL  胆固醇溶液和 11.7 μL DMG-PEG 溶液，充分混合得到澄清的混合溶液 I。混合溶液 I 每 μL 纯乙醇中含有 19 μg 的总脂质。

 

mRNA 包载物

mRNA 应溶解在 10 mM 柠檬酸盐缓冲液 (10 mM，pH 4) 中，将上述步骤中得到的脂质混合溶液与含有 mRNA 的水性缓冲液快速混合以实现 40/1 (总脂质/mRNA，wt/wt) 的最终重量比。

注：mRNA 比例可以增加以降低潜在的脂质毒性

 

mRNA –LNP 的制备

有三种常用的方法可以实现混合脂质溶液和 mRNA 溶液的快速混合：移液管混合法 (小规模制备)、涡旋混合法 (中等规模制备) 和微流体混合法 (大规模制备) 。

 

01移液管混合法 (小规模制备)

1. 将 16.8 μL 上面得到的混合溶液 I 加入不含 RNA 酶的 1.5 mL 试管中；

2. 向试管中加入 1.2 μL 乙醇，充分混匀得到混合溶液 II；

3. 取另一个不含 RNA 酶的 1.5 mL 试管，加入 46 μL 柠檬酸缓冲液 (10 mM，pH 4)，向试管中加入 8 μL mRNA (1.0 mg/mL)，混合均匀;

4. 取 54 μL mRNA 缓冲液 加入步骤 2 中获得的混合溶液 II，立刻吹打混匀 20-30s (手动混匀);

注：水：乙醇的体积比为 3:1，混合后立即吹打混匀。否则可能影响 mRNA-LNP 混合物的活性。

5. 将步骤 4 得到的溶液在室温下孵育 15 min；

6. 使用透析管 (MWCO 3500) 在 1 x PBS 中透析上述溶液 1 h 以上，以除去乙醇和酸性缓冲液；

7. 透析后，将溶液转至不含 RNA 酶的 1.5 mL 试管中，测量体积;

8. 加入 1 x PBS 溶液，使总体积达到 800 μL。

注：这步得到的溶液可以在 4℃ 短期保存。 

 

02涡旋混合法 (中等规模制备)

1. 将 21 μL 上面得到的混合溶液 I 加入不含 RNA 酶的 1.5 mL 试管中；

2. 向试管中加入 9 μL 乙醇，充分混匀得到混合溶液 II；

3. 取另一个不含 RNA 酶的 1.5 mL 试管，加入 80 μL 柠檬酸盐缓冲液 (10 mM，pH 4)，向试管中加入10 μL mRNA (1.0 mg/mL)，混合均匀;

4. 将涡旋混合器设备设置为“ON”，速度水平设置为“1”;

5. 在涡旋混合器上以中速涡旋 mRNA 缓冲液，再移取 30 μL 混合溶液 II 快速加入涡旋溶液中，将所得混合溶液涡旋 20-30 S;

注：水：乙醇的体积比为 3:1，混合后立即吹打混匀。否则可能影响 mRNA-LNP 混合物的活

6. 将步骤 5 所得溶液在室温下孵育 15 min;

7. 使用透析管（MWCO 3500) 在 1 x PBS 中透析上述溶液 1 h 以上，以除去乙醇和酸性缓冲液;

8. 透析后，将溶液转至不含 RNA 酶的 1.5 mL 试管中，测量体积;

9. 加入 1 x PBS 溶液，使总体积达到 1000 μL。

注：这步得到的溶液可以在 4℃ 短期保存。

 

03微流体混合法 (大规模制备)

具体操作方案使用仪器相关度很高，建议参考具体使用的仪器官网步骤进行。

 

 

03 LNP 的表征  Characterization of LNPs

为了确保 LNP 的质量和有效性，需要对 LNP 进行参数表征，例如尺寸、PDI、电荷、RNA EE。

• Zeta (平均直径/粒径): 通过动态光散射 (DLS) 检测。

• PDI (Polydispersity index, 多分散指数) ：范围 0-1，数值越高表示多分散性越强，数值越小表示粒度越均匀，通过动态光散射 (DLS) 检测。

• Charge (电荷)：对于基于 RNA 的 LNP，通常优选近中性电荷，通过 ζ 电位分析仪测量。

• Morphology (形态)：通过电子显微镜 (TEM、Cyro-EM、SEM、AFM 等) 检测。

• RNA EE (RNA Encapsulation Efficieney%, RNA 包封效率) ：可通过 Ribogreen 测定来测量，先测定 LNP 外的 RNA 浓度，然后使用表面活性剂溶解 LNP 来测量 LNP 内部和外部的总 RNA 浓度，计算公式如下：

 

 

图 2. LNP 的表征参数与相关检测仪器^[10]。

 

 

04脂质纳米颗粒的发展DEVELOPMENT OF LIPID NANOPARTICLES

LNP 是目前临床应用上最广泛的核酸药物递送载体，目前已有近 80 种基于 LNP 为递送载体的基因药物进入临床开发阶段，大大加速了基因治疗的发展^[10]。但是，LNP 在实际应用中仍存在许多问题，其一是因为 LNP 在经过体循环后通常在肝部富集，对其他给药器官的靶向困难^[11]。其二是 LNP 只能作为载体参与药物递送，无法协同 mRNA 治疗。

目前针对 LNP 体系的改良都和这两个方向有关。包括通过对 LNP 基本四组分的改造与优化增加 mRNA 递送效率并提高安全性，或者通过引入第五组分来改善肝外靶向递送^[12]。

另外一种主流的优化方案是通过引入带修饰的脂质原料，对 LNP 表面改性实现精准靶向。例如上面提到过的，使用马来酰胺化 PEG 脂质，与蛋白\抗体相连接，实现靶向组织、器官或细胞。

后续我们会出一期推文整理不同的修饰基团在其中的作用，以及如何设计 LNP 感兴趣的老师可以继续关注~

 

 

产品推荐

Cholesterol (HY-N0322) 是一种哺乳动物中的主要固醇，占质膜结构成分的 20-25％。

DSPE-PEG 2000 (HY-142979) 是一种含有 DSPE 和胺端末基的 PEG 聚合物。DSPE-PEG 2000 可用于形成胶束作为药物递送的纳米颗粒。

Lipid 5 (HY-138171) 是一种氨基脂质，可在啮齿动物和灵长类动物模型中提供有效的 mRNA 递送。

DOPG sodium (HY-141571) 是一种天然存在的阴离子磷脂，可以在水溶液中形成脂质双层，并用于生成胶束、脂质体和其他人工膜。

OptiLNP RNA 转染试剂 (肺部靶向) (HY-K2025) 是一种基于脂质纳米粒 (LNP) 技术开发的即用型转染试剂，适用于实验动物的 mRNA 和短链 RNA 通过静脉注射给药的肺部靶向递送。

OptiLNP RNA 转染试剂 (干细胞) (HY-K2019) 是一种基于脂质纳米粒 (LNP) 技术开发的即用型转染试剂，适用于不同类型的 RNA 在免疫细胞中的转染。

Firefly luciferase mRNA-LNP (HY-153229) 是一种已包裹 Firefly luciferase mRNA 的脂质纳米粒 (LNP)，适用于 RNA 传递、翻译效率、细胞活力等检测。

 

参考文献：

[1] Jung HN,et al. Lipid nanoparticles for delivery of RNA therapeutics: Current status and the role of in vivo imaging. Theranostics. 2022 Oct 24;12(17):7509-7531.

[2] Vallazza B,et al. Recombinant messenger RNA technology and its application in cancer immunotherapy, transcript replacement therapies, pluripotent stem cell induction, and beyond. Wiley Interdiscip Rev RNA. 2015 Sep-Oct;6(5):471-99.

[3] Kowalski PS,et al. Delivering the Messenger: Advances in Technologies for Therapeutic mRNA Delivery. Mol Ther. 2019 Apr 10;27(4):710-728.

[4] Sebastiani F, et al.Apolipoprotein E Binding Drives Structural and Compositional Rearrangement of mRNA-Containing Lipid Nanoparticles. ACS Nano. 2021 Apr 27;15(4):6709-6722.

[5] Reichmuth AM,et al. mRNA vaccine delivery using lipid nanoparticles. Ther Deliv. 2016;7(5):319-34.

[6] Eygeris Y,et al. Chemistry of Lipid Nanoparticles for RNA Delivery. Acc Chem Res. 2022 Jan 4;55(1):2-12.

[7] Knop K,et al. Poly(ethylene glycol) in drug delivery: pros and cons as well as potential alternatives. Angew Chem Int Ed Engl. 2010 Aug 23;49(36):6288-308.

[8] Parhiz H,et al. PECAM-1 directed re-targeting of exogenous mRNA providing two orders of magnitude enhancement of vascular delivery and expression in lungs independent of apolipoprotein E-mediated uptake. J Control Release. 2018 Dec 10;291:106-115.

[9] Wang X,et al. Preparation of selective organ-targeting (SORT) lipid nanoparticles (LNPs) using multiple technical methods for tissue-specific mRNA delivery. Nat Protoc. 2023 Jan;18(1):265-291.

[10] Ma Y,et al. A perspective of lipid nanoparticles for RNA delivery. Exploration (Beijing). 2024 Apr 15;4(6):20230147.

[11] Witzigmann D,et al. Lipid nanoparticle technology for therapeutic gene regulation in the liver. Adv Drug Deliv Rev. 2020;159:344-363.

 

 

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