蛋白质功能的研究是细胞生物学领域的核心方向，传统手段包括基因敲除或RNA干扰等方法。生长素诱导的Degron系统（Auxin-inducible degron, AID）能通过小分子配体快速诱导靶蛋白降解，实现了蛋白功能的“开关式”精确调控，近年来已成为细胞生物学和化学生物学领域的革命性工具。5-Ph-IAA（AbMole，M28809）作为IAA（吲哚-3-乙酸，天然生长素）的衍生物，是AID2系统（Auxin-Inducible Degron 2）的核心配体组分，其与工程化OsTIR1(F74G）突变体的协同作用，实现了对靶蛋白的快速、高效且可逆的降解调控^[1]。

AID系统的分子机制源于植物生长素信号通路。在植物中，生长素（如IAA）与TIR1（Transport Inhibitor Response 1）受体结合，促进TIR1与Aux/IAA转录抑制蛋白的相互作用。随后，Aux/IAA转录抑制蛋白经E3泛素连接酶复合物介导的泛素化修饰被26S蛋白酶体降解，从而解除对生长素响应基因的抑制。科学家将这一机制移植至真核细胞：在细胞中稳定表达OsTIR1（或工程突变体）并将mAID（minimal AID，约45个氨基酸的Degron标签）融合于靶蛋白的N端或C端，加入IAA或5-Ph-IAA后，配体-OsTIR1复合物识别mAID标签，诱导靶蛋白的泛素化降解^[1]。5-Ph-IAA（CAS No.：168649-23-8）相较于天然IAA的优势在于其与OsTIR1(F74G）突变体的亲和力更高（Kd降低约10倍），且降解动力学更快，在AID2系统中，5-Ph-IAA处理5–30分钟即可观察到靶蛋白水平显著下降，而传统AID系统（IAA + 野生型OsTIR1）通常需要1～4小时才能达到相当效果^[2]。

AID2系统的构建需要两个关键遗传元件的共表达：OsTIR1(F74G）突变体和mAID标签。OsTIR1(F74G）的F74G突变位于配体结合口袋，扩大了疏水性空腔以适应5-Ph-IAA（AbMole，M28809）的苯基取代基，同时保持了与SCF复合物的结合能力；mAID标签源自拟南芥IAA17蛋白的Degron核心序列，经优化后仅保留45个氨基酸，降低了对靶蛋白功能的干扰^[2]。在细胞实验中，5-Ph-IAA的降解效率已在多种细胞系中得到验证。HeLa细胞中，稳定表达OsTIR1(F74G)-mCherry和mAID-GFP融合蛋白的细胞，经1–10 μM 5-Ph-IAA 处理5–30分钟后，GFP荧光强度下降超过90%，且该降解可被蛋白酶体抑制剂MG132（10 μM）完全阻断，证实了泛素-蛋白酶体途径的依赖性；而洗脱5-Ph-IAA后，新合成的mAID-GFP在2–4小时内恢复至基础水平，实现了蛋白功能的可逆调控^[3]。HCT116结肠癌细胞中，5-Ph-IAA 诱导的mAID-RPA2（复制蛋白A2，DNA复制关键因子）降解可在30分钟内完成，导致DNA复制叉停滞和S期阻滞，该效应在去除配体后完全恢复，为研究DNA复制检查点机制提供了理想工具^[3]。

与传统AID系统（IAA + OsTIR1野生型）相比，AID2系统即5-Ph-IAA + OsTIR1(F74G)的改进具有多重意义。降解速度方面，AID2的半降解时间（t₁/₂）约为5–15分钟，AID1约为30–120分钟，这对于研究细胞周期快速转换事件（如有丝分裂的进入与退出）至关重要；脱靶效应方面，5-Ph-IAA（AbMole，M28809）与野生型OsTIR1及其他人类蛋白的交叉反应极低，背景降解信号显著降低；组织渗透性方面，5-Ph-IAA的脂溶性高于IAA，在类器官和3D培养体系中的分布更均匀，降解效率更高^[4]。

5-Ph-IAA（AbMole，M28809）还在细胞周期和染色体生物学研究中的应用尤为突出。有丝分裂研究中，mAID标签融合于CENP-A（着丝粒特异性组蛋白H3变体）、Ndc80（动粒微管结合蛋白）或Aurora B（染色体乘客复合物激酶），5-Ph-IAA处理可在数分钟内诱导靶蛋白降解，实时观察着丝粒组装、纺锤体附着或染色体分离的缺陷^[4]。DNA损伤修复研究中，mAID标记的RAD51、BRCA2或53BP1经5-Ph-IAA（CAS No.：168649-23-8）快速降解后，可精确解析同源重组修复和非同源末端连接修复的时空调控机制，揭示修复因子在损伤位点的招募顺序和功能分工^[4]。

5-Ph-IAA（AbMole，M28809）还能用于动物实验。线虫（C. elegans）中，5-Ph-IAA通过食物摄入（大肠杆菌OP50培养基中添加100 μM–1 mM）可实现肠道和生殖细胞中mAID融合蛋白的降解，用于研究胚胎发育中的细胞命运决定；果蝇（D. melanogaster）中，5-Ph-IAA 经饲料或注射给药，可在特定组织（如翅原基、眼成虫盘）中诱导靶蛋白降解，研究器官发育的信号调控^[3]。哺乳动物模型中，小鼠AID2转基因系的构建已取得成功——通过组织特异性启动子驱动OsTIR1(F74G）表达，结合Cre-loxP系统实现mAID标签的组织特异性敲入，5-Ph-IAA腹腔注射（10–50 mg/kg）可在特定组织（如肝脏、肠道、T细胞）中诱导靶蛋白降解，为研究组织特异性蛋白功能提供了体内工具^[5]。

参考文献及鸣谢

[1] Nishimura, K.; Fukagawa, T.; Takisawa, H.; et al. An auxin-based degron system for the rapid depletion of proteins in nonplant cells. Nature Methods 2009, 6 (12), 917–922.

[2] Yesbolatova, A.; Saito, Y.; Kitamoto, N.; et al. The auxin-inducible degron 2 technology provides sharp degradation and in tune stabilization of proteins in mammalian cells and mice. Nature Communications 2020, 11, 5701.

[3] Morawska, M. M.; Ulrich, H. D. An expanded tool kit for the auxin-inducible degron system in budding yeast. Yeast 2013, 30 (9), 341–351.

[4] Holland, A. J.; Fachinetti, D.; Han, J. S.; et al. Inducible, reversible system for the rapid and controlled degradation of proteins in mammalian cells. Proceedings of the National Academy of Sciences 2012, 109 (49), E3350–E3357.

[5] Natsume, R.; Eitoku, T.; Inagaki, N.; et al. Rapid protein depletion in human cells using auxin-inducible degron technology with a chemical auxin analog. BMC Biology 2016, 14, 74.

细胞实验参考

细胞系： HeLa cells stably expressing OsTIR1(F74G) and CEP192-mAID

方法： For cellular depletion assays, HeLa cells harboring OsTIR1(F74G) and CEP192-mAID were cultured in DMEM supplemented with 1 μM 5-Ph-IAA for 6 h before whole-cell lysis and Western blot analysis to assess CEP192 protein abundance. Control cells were treated with an equal volume of solvent DMSO only.

浓度：1 μM

处理时间：6 h

参考文献：Sci. Adv.11,eadq2339(2025).

* 上述方法来自公开文献，仅供相同目的实验参考。如实验目的、材料、方法不同，请参考其他文献。

动物实验参考

动物模型：Rosa26LSL-OSTir1-F74G and Cep192mAID-mNeonGreen mice were generated using CRISPR-Cas9 technology. 

配制：5-phenyl-1H-indole-3-acetic acid (5-Ph-IAA) was dissolved in sterile PBS. Specifically, 10 mg of 5-Ph-IAA was dissolved in 1 ml of PBS under dropwise addition of NaOH. Once dissolved, the pH was adjusted to 7.4 using minute amounts of HCl and reconstituted with PBS to achieve a concentration of 1 mg/ml. The solution was sterile filtered using 0.2-μm syringe filters prior to injection.

剂量：1 mg/kg、5 mg/kg

给药处理：Mice were injected intraperitoneally with 1 or 5 mg/kg 5-Ph-IAA either once or repeatedly every 24 h; control mice received intraperitoneal injection of equal volume sterile PBS.

参考文献：Sci. Adv.11,eadq2339(2025).

* 上述方法来自公开文献，仅供相同目的实验参考。如实验目的、材料、方法不同，请参考其他文献。  体内实验的工作液，建议现用现配，当天使用；如在配制过程中出现沉淀、析出现象，可以通过超声和（或）加热的方式助溶。  切勿一次性将产品全部溶解。

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