研究背景

近年来，随着诸如胞嘧啶碱基编辑器（cytosine base editor, CBE）、腺嘌呤碱基编辑器（adenine base editor, ABE）和先导编辑器 （prime editor, PE）等新型基因编辑工具不断被开发，CRISPR/Cas系统引领的基因编辑技术在众多领域展现了巨大的应用潜力。然而，脱靶效应——即在预期目标之外产生的编辑——不仅影响了生物学研究的准确性，也给基因治疗的临床应用带来了潜在的安全隐患。2023年美国食品药品监督管理局在审查首个CRISPR基因编辑疗法的上市申请时，风险评估，尤其是脱靶效应是其关注焦点。高效且精准地检测脱靶效应成为了基因编辑技术的关键挑战之一。

为应对脱靶挑战，科学界提出了多种检测方法，包括基于生物信息学的预测、生物化学检测和细胞水平检测方法。然而现存方法普适性较低，或仅针对有限的编辑系统或细胞类型设计，并且大多数方法无法应用于离体及体内编辑时的脱靶检测。

研究结果与展望

目前的主流基因编辑器均依赖于DNA损伤后的修复过程实现基因编辑，复制蛋白A（replication protein A, RPA）广泛存在于基因组双链及单链损伤修复过程，Tracking-seq通过CUT&RUN技术特异性地识别并捕获与RPA结合的单链DNA（Single-stranded DNA, ssDNA），随后利用链特异性核酸酶消化双链DNA以提高信噪比，构建链特异性ssDNA文库进行高通量测序，并通过新开发的算法精确计算RPA信号强度，进而实现对多种编辑工具的脱靶检测。

图1. Tracking-seq示意图

相较于现有的GUIDE-seq和DISCOVER-seq等脱靶检测技术，Tracking-seq不仅展现了高召回率，而且具备很高的检测精确度。重要的是，其具有高度的泛用性，使其能够适用于Cas9、CBE、ABE以及PE等各类主流基因编辑工具，并能适应不同的细胞类型及不同的编辑环境（包括体外、离体及体内编辑）。此外，Tracking-seq的高灵敏度使其能够在仅有数千个细胞的样品中，有效地进行脱靶检测，并保持优异的结果。

图2. Tracking-seq检测不同编辑工具的链特异性信号

得益于Tracking-seq的高泛用性，本研究发现当使用相同的向导RNA时，Cas9、CBE、ABE和PE的脱靶效应存在明显差异，其中Cas9和CBE之间观测到了许多近似于各自特异的脱靶位点。此外，不同类型的细胞中也观察到了脱靶效应的异质性，脱靶事件似乎更容易在染色质开放和活跃的区域发生。这些脱靶效应的异质性提示，使用替代性编辑系统或在不同细胞类型中进行的脱靶检测，可能无法准确反映目标细胞中实际的脱靶情况。相比之下，Tracking-seq技术能够直接对原始编辑系统进行脱靶检测，因此具有广阔的应用潜力和前景。

清华大学蓝勋副教授、李寅青副教授以及朱明助理研究员（博士后）为本研究的共同通讯作者。清华大学医学院朱明博士、博士生许润达、药学院博士生袁俊松和生命学院博士生王嘉程为共同第一作者。此外，该研究还得到了清华大学杜娟娟研究员团队、林欣教授团队、颉伟教授团队，烟台毓璜顶医院林春华教授团队，桂林医学院于鸿浩教授团队的重要帮助。同时感谢清华大学祁海教授团队及中国科学院动物研究所魏妥研究员团队的帮助。

该项目受到国家重点研发计划、国家自然科学基金、北京市自然科学基金、清华北大生命联合中心、清华大学自主科研计划的资助。

相关论文信息：

https://doi.org/10.1038/s41587-024-02307-y

编辑 |余 荷

排版| 王大雪

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