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circRNA海绵:广泛分析circRNA表达及其在miRNA海绵中的作用
环状RNA (circRNA)被归类为长链非编码RNA (lncRNA),尽管有报道称有少数环状RNA编码蛋白质。环状RNA的特点是其环状结构,这使得它们不容易降解。circRNA的生物发生可以通过前体信使RNA (pre-mRNA)的选择性剪接过程中发生的反剪接事件来解释,其中上游外显子的5’端和下游外显子的3’端共价连接。环状RNA与线性RNA的不同之处在于,环状RNA缺乏5’帽和3’聚腺苷化尾部及其圆形,这使得环状RNA更稳定,并且在大多数情况下,对外切酶活性具有抗性。这些环状分子可以由剪接的pre-mRNA的外显子和内含子区域组成,因此具有各种大小,范围从100 ~ >4000个核苷酸。circRNA在物种中是保守的,其表达具有组织和疾病特异性。因此,它们可以作为生物标志物和治疗靶点发挥重要作用。另一种非编码RNA是microRNA (miRNA),它在转录后基因调控中发挥作用,并参与许多生物过程和疾病。miRNA通过RNA诱导的沉默复合体,导致靶基因的降解或阻止它们翻译。
环状RNA、miRNA、编码蛋白质的信使RNA (mRNA)以及共享miRNA结合位点的其他类型RNA之间可能的相互作用产生了一个庞大的调控网络。Salmena等人提出,任何携带miRNA结合位点的RNA(如mRNA、环状RNA、假基因、3‘端非编码区(UTR)转录本和lncRNA的转录本)都可以作为竞争性内源性RNA (ceRNA),竞争细胞中有限的可用miRNA。这种竞争的结果是,过度表达的RNA可以吞噬其他RNA调节所需的miRNA,这可以解释为什么非编码RNA,如环状RNA,可能与表型有关。
circRNA稳定性的增强可能允许它们通过结合miRNA作为缓冲,直到存在足够的miRNA超过circRNA结合位点。circRNA的调节功能及其与疾病的关联是鉴定circRNA和miRNA之间的海绵活性特别有趣的主要原因。miRNA和circRNA之间存在相互作用已被反复证实,一些circRNA(例如CDR1as/CiRS-7, SRY和circNCX1)已被认为是miRNA海绵。尽管个别研究证实了circRNA海绵的存在,但还需要进一步的研究来阐明circRNA在miRNA介导的基因调控中所发挥的作用。
从计算的角度来看,环状RNA的检测是困难的,因为它们的形状是环形的,并且缺乏poly(A)尾部,这使得在富含poly(A)的RNA测序(RNA-seq)文库中不太可能观察到它们。因此,环状RNA只能在没有poly(A)富集的文库中被检测到,例如核糖体RNA (rRNA)耗尽的RNA-seq和总RNA-seq,它们不会耗尽环状RNA。circRNA的鉴定依赖于检测未映射读段之间的反向剪接连接,从而可以估计circRNA的丰度。由于只关注反向剪接连接,circRNA相对于其线性对应物的表达通常被低估了。
已经提出了几种circRNA分析方法。Chen等人[1]回顾了100种现有的circRNA相关工具,用于circRNA检测、注释、下游分析以及网络分析。他们总共列出了44种circRNA识别工具,包括但不限于CIRCexplorer、find_circ、CIRI、KNIFE和circRNA_finder。他们还提供了从文献中收集circRNA信息的14个circRNA注释数据库,如circBase 和CIRCpedia。其他circRNA相关工具包括用于特征收集和存储与疾病和生物标志物相关的circRNA信息的数据库。此外,circRNA网络鉴定工具可以模拟circRNA与miRNA、lncRNA或RNA结合蛋白之间的相互作用。circRNA下游分析的其他工具包括选择性剪接检测、circRNA组装和结构预测和可视化。目前,没有一种工具能提供综合circRNA和miRNA的鉴定和定量的全面和自动化的circRNA海绵分析,以及对潜在的circRNA-miRNA海绵事件的系统调查和ceRNA网络分析。Hoffmann等人[2]开发了“circRNA海绵”工具,这是一个流式管道,整合了最先进的方法来:(i)从总RNA-seq数据中识别反向剪接连接来检测circRNA,(ii)量化它们相对于线性转录物的表达值,(iii)进行差异表达分析,(iv)从miRNA测序(miRNA-seq)数据中识别和量化miRNA表达,(v)预测miRNA在circRNA上的结合位点,(vi)系统地研究潜在的circRNA-miRNA海绵事件,(vii)创建ceRNA网络和(viii)使用ceRNA网络识别潜在的circRNA生物标志物(图1)。
图1 “circRNA海绵”工具工作流程。该管道由三个模块组成:(1)circRNA模块,(2)miRNA模块和(3)海绵模块。在(1)中,通过从总RNA-seq数据中识别反向剪接连接来检测circRNAs,量化它们的表达值,进行差异表达分析,并使用三种最先进的方法中的多数投票来预测circRNAs上的miRNA结合位点。在(2)中,要么在原始miRNA-seq中检测和定量miRNA,要么直接处理miRNA表达数据。在(3)中,系统地研究了circRNA-miRNA海绵事件,创建了一个ceRNA网络,并用它来识别潜在的circRNA生物标志物
作者们展示了“circRNA海绵”工具对来自小鼠脑组织的匹配rRNA耗尽的RNA-seq和miRNA-seq数据的潜力。详细结果与分析见文献[2],“circRNA海绵”工具可参考https://github.com/biomedbigdata/circRNA-sponging。
参考文献
[1] Chen L, Wang C, Sun H, Wang J, Liang Y, Wang Y, Wong G. The bioinformatics toolbox for circRNA discovery and analysis. Brief Bioinform. 2021 Mar 22;22(2):1706-1728. doi: 10.1093/bib/bbaa001.
[2] Hoffmann M, Schwartz L, Ciora OA, Trummer N, Willruth LL, Jankowski J, Lee HK, Baumbach J, Furth PA, Hennighausen L, List M. circRNA-sponging: a pipeline for extensive analysis of circRNA expression and their role in miRNA sponging. Bioinform Adv. 2023 Jul 8;3(1):vbad093. doi: 10.1093/bioadv/vbad093.
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5. EMT标记物数据库:EMTome
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9. RNA修饰关联的读出、擦除、写入蛋白靶标数据库:RM2Target
13. 利用药物转录组图谱探索中药药理活性成分平台:ITCM
19. 基因组、药物基因组和免疫基因组水平基因集癌症分析平台:GSCA
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24. HMDD 4.0:miRNA-疾病实验验证关系数据库
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