人体每天都会产生上亿个死亡细胞。将旧细胞清除，给新的细胞留出位置，才能够使组织或器官保持活力与稳态。如果清除过程不顺利，则有可能会导致不良后果，如 系统性红斑狼疮诱因之一就是凋亡细胞的积累诱发细胞继发性坏死，释放与损伤相关的分子模式，导致大范围的炎症反应 。 因此，清除死亡细胞对维持体内平衡具有重要意义。
胞葬作用 (Efferocytosis) 就是指吞噬细胞清除程序性死亡细胞的过程。 在大多数组织中，胞葬作用由专职性吞噬细胞 (巨噬细胞和树突细胞) 或垂死细胞附近的非专职性吞噬细胞 (上皮细胞和纤维细胞) 来完成。胞葬 作用能够阻止垂死细胞发生继发性坏死，以免释放出可能引起炎症的有害细胞内容物 (如氧化物和蛋白酶) 。那么吞噬细胞是如何识别垂死细胞并清除掉它们的呢？ 来听听胞葬作用的三部曲~Find-Eat-Digest~♪
垂死细胞会释放出可溶性介质，这些介质中就包含让吞噬细胞识别的 “Find me” 信号 ，包括核苷酸 (如 ATP, UTP) 、膜脂 (如磷酸鞘氨醇) 、趋化因子 (如 CX3CL1 ) 等。这些信号不仅能吸引吞噬细胞，还能使吞噬细胞做好 “作战” 的准备，例如增强吞噬受体和消化机制的表达。
凋亡细胞的核苷酸 “F ind me” 信号可通过 pannexin 通道 (被凋亡过程中 caspase 3/7的裂解激活) 释放 (图 1) 。 释放的 ATP 通过嘌呤受体 P2Y 诱导吞噬细胞迁移。此外，核苷酸还能够调节巨噬细胞的免疫机制。例如，凋亡细胞的 ATP 或 AMP 可转化为腺苷，腺苷再通过腺苷受体抑制炎症，上调抗炎 (anti-inflammatory) 和促消炎 (pro-resolution) 基因表达 (包括 Nr4a1 和血小板反应蛋白) 。 非凋亡细胞的脂膜完整性被破坏，炎症信号直接被释放到细胞外。 被病原体感染的细胞会释放病原体相关分子模式 (PAMP) ，该信号可与吞噬细胞上或吞噬细胞中的模式识别受体 (PRR) 结合，影响巨噬细胞的功能和免疫激活。另外，非凋亡细胞也会释放损伤相关分子模式 (DAMP) ，触发炎症反应，可作为巨噬细胞的趋化因子。 图 1. 吞噬细胞识别凋亡细胞[1]
凋亡细胞释放 “Find me” 信号 (核苷酸、膜脂、趋化因子等)，吞噬细胞上相应的受体与之结合，诱导吞噬细胞迁移、上调抗炎/促消炎基因表达，以及调节细胞骨架 吞噬细胞迁移到凋亡细胞附近后，表面受体识别凋亡细胞的 “Eat me” 信号，与之结合。 “Eat me” 信号包括磷脂酰丝氨酸 (Phosphatidylserine, PS) 、钙网蛋白、氧化低密度脂蛋白等，其中 PS 是最有效、进化上最保守的信号分子。 所有形式的细胞死亡的一个共同特征是质膜中磷脂不对称性的丧失，PS就会暴露在细胞外，促进死亡细胞被吞噬。 凋亡过程中，位于细胞内侧的 PS 会在早期阶段从内侧翻转到表面。吞噬细胞的 PS 受体可以直接或间接识别暴露在表面的 PS。BAI1 (PS 受体) 与 PS 结合后，通过 ELMO1-DOCK 复合物启动细胞内信号传导，以诱导 Rac1 介导的肌动蛋白细胞骨架重排 (图 2) ，为 “吃掉” 凋亡细胞做好准备。 与之相对的是，健康细胞表面暴露
“Don't eat me” 信号，包括 CD47 和 CD24。活细胞上的 CD47 与巨噬细胞的 SIRPα 结合，导致 SIRPα
胞质结构域的酪氨酸磷酸化，募集到的 SHP1/2 再通过非肌肉肌球蛋白 IIA 来抑制吞噬作用 (图 2) 。这些信号能使健康细胞避免被吞噬细胞清除。
图 2. 吞噬细胞结合凋亡细胞[1]
吞噬细胞直接 (BAI1, TIM1) 或间接 (AXL, MerTK) 识别凋亡细胞表面的 PS，激活 ELMO 和 DOC 蛋白的表达，进而激活 GTPase RAC1，增强肌动蛋白重塑和吞噬杯的形成。健康细胞表面的 CD47 能阻止被吞噬
在与垂死细胞结合后，吞噬细胞启动肌动蛋白重塑，质膜内陷及局部外溢形成吞噬体，通过胞吞作用将垂死细胞 “吃掉” 。胞吞后形成吞噬体，吞噬体膜会发生多种生化变化，这些过程由 Rab GTPase 蛋白家族控制。吞噬体成熟后，通过形成 Ca2+ 依赖性 SNARE 复合物 (由 VAMP7 和 Syntaxin 7 组成) 与溶酶体直接融合 (图 3a) 。溶酶体内有大量蛋白酶、核酸酶和脂肪酶，可消化吞噬体中凋亡细胞。 另外还有 LC3 (微管相关蛋白 1A/1B-轻链 3) 相关吞噬作用 (LAP) 通路 (图 3b) 。吞噬细胞吞噬垂死细胞后，LAP PI3K 复合物 被募集到含有凋亡细胞的LAP相关吞噬体 (LAPosome) ，该复合物对 LAPosome 的保持至关重要，并且激活了 LC3 的连接机制。LC3 的连接促进了 LAPosome 与溶酶体融合，提高了清除死细胞的效率并且保持免疫沉默。
图 3. 吞噬细胞吞噬凋亡细胞[2]
a. 溶酶体降解途径： VPS34 被募集到RAB5-positive早期吞噬体，催化磷脂酰肌醇形成 PI3P (这些都是吞噬体成熟所必需的物质)， 早期吞噬体成熟为晚期吞噬体后，最终与溶酶体融合。 b. LAP 通路： LAP PI3K 复合物 (由 Beclin 1、VPS34、VPS15、UVRAG 和 Rubicon 组成) 激活 LC3 与 LAPosome 的连接，促进 LAPosome 的成熟，以及与溶酶体融合
溶酶体中含有大量蛋白酶、核酸酶、脂肪酶。吞噬体与溶酶体结合后，形成新的吞噬溶酶体 (Phagolysosome) 。 高酸度的环境 (pH=4.5~5.0) 和活性组织蛋白酶能降解垂死细胞 。吞噬细胞还可重利用一些降解的垂死细胞成分。
大部分情况下，死亡细胞的数量都是远远超过吞噬细胞，所以吞噬细胞需要同时清除多个细胞。而垂死细胞带有膜、胆固醇、蛋白质、核酸等，这些物质需要被代谢。这对于吞噬细胞来说是巨大的负担，需要控制其自身的体积和表面积以及迅速改变免疫代谢环境。凋亡细胞本身也能改变吞噬细胞的免疫代谢 (图 4) ：(1) 凋亡细胞表面的 PS 与受体结合后能激活或上调 LXR 和 ABCA1，可促进胆固醇的代谢与输出；(2) 凋亡细胞线粒体的脂肪酸氧化可促进抗炎因子 IL-10 的表达；(3) 吞噬细胞利用凋亡细胞的精氨酸 (Arginine) 驱动肌动蛋白细胞骨架重排，促进之后几轮的凋亡细胞摄取；(4) 糖酵解与葡萄糖输入的增加也促进 ATP 生成和肌动蛋白聚合。
图 4. 凋亡细胞调节吞噬细胞免疫代谢环境[1]
常规的胞葬作用研究是在体外进行，例如使用原代人巨噬细胞和凋亡 Jurkat T 细胞进行免疫荧光染色后，可在显微镜下观察到胞葬作用的过程 [3] 。但由于凋亡细胞易被清除，在体内检测仍是个巨大的挑战。不过，办法总比困难多嘛~
Raymond 等人开发了一种基因编码的荧光报告基因 CharON，实现了在果蝇胚胎发育过程中胞葬作用的活细胞追踪[4] 。这一研究结果于今年 3 月发表在 Science 杂志上。
研究者们首先设计了针对细胞凋亡和胞葬作用的传感器。 针对细胞凋亡，他们设计了 一种绿色荧光蛋白 (GFP) 探针。 细胞凋亡时表达的 caspases 3/7 能切割 GFP，使之发出荧光 (图 5a ) ；GFP 在溶酶体的酸性条件下易淬灭，经突变 Q204H 基因后， GFP 对 pH 耐受。经过以上改造，他们设计出 pH 耐受的绿色荧光探针 pH-CaspGFP ——它能准确地报告凋亡的细胞。针对吞噬作用，他们设计了一种新的红色荧光 pH 值传感器 pHlorina ，它随着 pH 值的降低而增加荧光强度。最后 将这两种传感器结合起来，获得探针 “CharON” (图 5b) 。CharON 转基因的细胞，在凋亡时首先发绿色荧光，在被吞噬并在溶酶体内酸化后，随着 GFP 逐渐淬灭，pHlorina 的红色荧光强度增加。CharON 将连续性细胞事件可视化。
图 5. pH-CaspGFP 的设计 (a) CharON 探针检测胞葬过程 (b) 示意 图 [4] 细胞凋亡时，caspase 3/7 切割 GFP，发绿色荧光；被吞噬细胞吞噬后，在酸性环境中 GFP 逐渐淬灭，红色荧光 pHlorina 强度增加 为了追踪体内胞葬过程，研究者培育出 CharON 转基因果蝇。在果蝇胚胎发育的中后期，发育中的中枢神经系统 (CNS) 有一波细胞凋亡。CharON 使体内胞葬过程更完整地呈现出来，包括细胞凋亡、吞噬细胞募集、Find、Eat 和 Digest (图6) 。通过 CharON 还观察到，胚胎果蝇 CNS 中清除凋亡细胞的“重任”由具有吞噬功能的神经胶质细胞和分散的腹侧血细胞 (巨噬细胞) 共同承担。并且还观察到神经胶质细胞和巨噬细胞中吞噬体的大小也有差异，巨噬细胞中凋亡细胞的荧光更密集。
图 6. CharON 可视化果蝇胚胎内胞葬作用的不同阶段 [4]
0~1 min：凋亡细胞募集巨噬细胞；2 min：凋亡细胞与巨噬细胞结合；3~5 min：巨噬细胞吞噬。 MΦ (蓝色虚线轮廓)： GFP 标 记的巨噬细 胞； A.C. (虚线轮廓)： 凋亡细胞。 细胞凋亡诱导 pH-CaspGFP (绿色) 激活和巨噬细胞 (绿色) 迁移，靶标与受体结合后被吞噬，消化 后通过增加 pHlorina 信号 (红色) 检测凋亡细胞的酸化/降解 胞葬作用涉及多个信号通路，包括受体网络、细胞溶质信号分子、细胞骨架快速重排、凋亡细胞消化和免疫代谢通路。这些通路运行不畅则有可能导致多种胞葬缺陷相关疾病 (神经退行性疾病、视网膜变性、动脉粥样硬化、癌症等) ，因此了解胞葬作用机制对于治疗这些疾病更有重要意义。尽管研究之路还很漫长，但相信总有一天我们能攻破难题~ 相关产品
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1.
Parul Mehrotra, Kodi S. Ravichandran. Drugging the efferocytosis
process: concepts and opportunities. Nat Rev Drug Discov. 2022; 21(8):
601-620. 2.
Emilio Boada-Romero, et al. Mechanisms and physiology of the clearance
of dead cells by efferocytosis. Nat Rev Mol Cell Biol. 2020 Jul; 21(7):
398-414. 3. Evans AL, Heit B, et al. Quantitative Efferocytosis Assays. Methods Mol Biol. 2017;1519:25-41. 4.
Raymond MH, Ravichandran KS, et al. Live cell tracking of macrophage
efferocytosis during Drosophila embryo development in vivo. Science.
2022 Mar 11;375(6585):1182-1187.
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