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FlowJo分析凋亡数据
作者:胡金涛
一、细胞凋亡的机制及染色原理
细胞凋亡又称细胞程序性死亡,有别于细胞坏死。细胞凋亡是指在一定的生理病理情况下机体为维护内环境的稳定,通过基因调控,在一系列酶的参与下,使生物体内一些无用的,老化的细胞高度有序的,自动死亡的过程。Annexin V-FITC/PI双标记法来检测细胞的凋亡是实验室通常采用的一种方法。
Annexin V-FITC/PI双标法染色的原理:磷脂酰丝氨酸(PS)能与连接素V(Annexin V-FITC)发生特异性结合。正常的活细胞带负电磷脂酰丝氨酸(PS)位于细胞膜的内侧。细胞凋亡发生时,由于细胞膜磷脂对称性的改变而使PS外翻暴露于细胞膜外。PI为核酸荧光染料,不能穿透正常细胞的细胞膜,只能进入细胞膜损坏的细胞。凋亡细胞因为PS外翻从而可以和Annexin结合,但是保持了细胞膜的完整性,不能与PI结合。当细胞凋亡晚期或发生继发性坏死时,细胞膜破坏,可以同时被Annexin V-FITC/PI着色。 所以如果是Annexin单阳性的细胞的话,就是凋亡早期细胞,如果Annexin, PI 双阳性的话,即是坏死细胞,从而使用流式细胞分析的方法区分凋亡细胞和坏死细胞。
二、FlowJo分析凋亡数据的过程
1. 把凋亡样品拖入FlowJo软件,双击打开原始数据。如(图一)所示:
X轴选择FSC-A,Y轴选择SSC-A。分析凋亡的细胞选择上图所示的细胞群体进行分析。细胞碎片不予分析。
1. 在SSC/FSC图中双击分析的细胞群体,如(图二)所示:
X轴选择FITC,用来表示AnnexinV-FITC。Y轴选择PE-Texas,用来表示PI。用四分门设门工具 界定活细胞和凋亡细胞。
三、凋亡数据结果分析
1. 用四分门设门的原则:四分门设门要根据阴性对照界定阴性置信区。根据细胞分群的趋势,四分门的界定线可设在阴性、阳性细胞的分群处,因为正常培养的细胞也会发生自然的凋亡,允许阴性对照非特异荧光信号(假阳性)一般小于1%-3%。
2. 图二中各个区域的含义:
Q1:(AnnexinV-FITC)-/PI+,此区域的细胞为坏死细胞。也可能有少数的晚期凋亡细胞在其中,甚至机械损伤的细胞也包含其中。
Q2: (AnnexinV+FITC)-/PI+,此区域的细胞为晚期凋亡细胞。
Q3:(AnnexinV-FITC)+/PI-,此区域的细胞为早期凋亡细胞。
Q4:(AnnexinV-FITC)-/PI-,此区域的细胞为活细胞。
通常统计细胞凋亡率时采用Q3+Q2。
四、凋亡数据结果输出
凋亡结果的输出根据最终的需求可以有多种输出方式
1. 在双参数图上点击鼠标右键选择复制图片,可以把图片粘贴到WORD或PPT中。
2. 在图形分析窗口工具栏中选择“文件”并单击,选择下拉菜单中的“另存为”,选择保存位置、重新命名文件名以及文件保存的文件类型(SVG、PNG、EMF、JPG)。
3. 把上述样品的分析应用到组中,在Flow Jo软件界面中单击打开布局编辑器,在工作台的样品空间把“分析的细胞群体结点”拖入布局编辑器中,在布局编辑器右上角点击Batch(批处理的按钮)将所有样本的分析进行批处理的输出。
4. 选中图片,点击右键,选择图片的属性。在图片定义窗口中,可以改变图形的类型,对图片的输出进行重新定义。如(图三)所示
(图三)
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