CRISPR-Cas13系统是细菌和古细菌中通过单个Cas蛋白降解外源入侵RNA的获得性免疫系统，相应的效应蛋白Cas13在crRNA介导下序列特异性识别并切割单链RNA，被激活的同时还会非特异性切割周围环境中的RNA。

Cas13是近年来一种新兴的RNA编辑工具，在不改变基因组序列的前提下，可以进行RNA水平的敲低、RNA的定点编辑、RNA的定位等，在基因和RNA的功能研究、疾病诊断和靶向治疗等方面有巨大的潜力和应用前景。

研究发现当目标RNA靶向序列的下游可以与crRNA重复区的3’端（tag）连续配对时，对Cas13a的活性有显著抑制作用，防止宿主细胞Cas13 系统的自我靶向，与tag区域配对的序列称为anti-tag。

已有的研究阐明了Cas13a对目标RNA特异性识别的分子机制，并发现目标RNA的装载使HEPN结构域从失活变为激活状态。在此基础上，研究人员首先对Leptotrichia shahii和Leptotrichia buccalis两种Cas13a进行体外酶活和体内RNA干扰研究，发现当目标RNA存在5nt以上anti-tag序列时，Cas13a对目标RNA和周围环境中的RNA的切割活性显著被抑制，对大肠杆菌细胞的RNA干扰活性也显著降低。

Anti-tag RNA的结合使HEPN结构域处于失活状态

随后，研究人员获得了含有8nt长度anti-tag序列的RNA与LshCas13a复合物的冷冻电镜结构，发现目标RNA的靶向区与crRNA间隔区形成RNA双链，同时目标RNA的anti-tag序列与crRNA的tag区形成的RNA双链。

与已有的结构比较发现，含有anti-tag序列的目标RNA的结合，引起Cas13a结构域的相对移动，使Cas13a呈现出与正常目标RNA装载前后均不相同的构象。Tag:anti-tag双链的形成，阻碍了HEPN结构域活性中心关键氨基酸的靠近，使HEPN结构域保持失活状态，从而抑制Cas13a对目标RNA和周围环境中RNA的切割活性，进而影响在大肠杆菌细胞RNA干扰的效果。

该研究工作得到张江实验室国家蛋白质科学研究（上海）设施电镜分析系统、南方科技大学冷冻电镜中心、上海科技大学冷冻电镜中心、浙江大学冷冻电镜中心、美国纪念斯隆凯特琳癌症中心电镜平台、国家蛋白质科学研究（上海）设施BL18U1和BL19U1线站的大力支持。

相关论文信息：

https://doi.org/10.1016/j.molcel.2020.12.033