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一、产品简介:
果胶酯酶(pectinesterase),属果胶酶系,亦称果胶甲酯酶、果胶氧化酶。催化水解果胶长链上的甲氧酯水解产生小分子物质果胶酸和甲醇, 从而增加果胶在水中的溶解度。广泛存在于高等植物和可以降解细胞壁的细菌和真菌中,起内源调控植物细胞壁上及细胞之间果胶含量的作用。
果胶酯酶(PE)催化水解果胶分子释放H+,使反应体系的pH下降,用碱液维持体系的pH始终保持在7.8(酚酞指示剂维持在粉红色),通过碱消耗的NaOH 量反映果胶酯酶的活性。
二、试剂盒组分与配制:
试剂名称 | 规格 | 保存要求 | 备注 |
提取液 | 液体80mL×1瓶 | 4℃保存 | |
试剂一 | 液体100mL×2瓶 | 4℃保存 | |
试剂二 | 液体1.5mL×1支 | 4℃保存 | |
试剂三 | 液体20mL×1瓶 | 4℃保存 | |
试剂四 | 液体30mL×1瓶 | 4℃保存 |
三、需自备的仪器和用品:
天平、研钵/匀浆器、台式离心机、恒温水浴锅或恒温培养箱、冰、蒸馏水。
四、操作步骤:
建议正式实验前选取2个样本做预测定,了解本批样品情况,熟悉实验流程,避免实验样本和试剂浪费!
1、预实验样本制备
① 组织样本:取0.5g 组织样品(叶片类样本可取0.15g),加1.5mL 提取液冰浴研磨,12000rpm,4℃离心15min,取全部上清液置于冰上待测。
② 细菌/培养细胞:先收集细菌或细胞到离心管内,离心后弃上清;取约500万细菌或细胞加入1.5mL提取液,超声波破碎细菌或细胞(冰浴,功率20%或200W,超声3s,间隔10s,重复30次);12000rpm,4℃离心10min,取上清置于冰上待测。
2、预实验上机操作:
① 试剂一于37℃烘箱保温10min。
② 取出1mL的上清液转移至10ml离心管或试管中。
③ 向离心管或试管中依次加25μL 试剂二,4mL试剂一,混匀,并用试剂三调pH至7.8(粉红色)。
④ 将离心管或试管于37℃(水浴锅或恒温培养箱)孵育60min。每隔20分钟用试剂四调节pH,使其维持在7.8(粉红色)。同时记录所消耗的试剂四的体积V2(mL)。
3、正式实验:
① 若酶活力太高,可降低样本取样质量W或将待测样本适当稀释后再进行测定,并将改变后的D和W代入公式计算;
② 确定好最适实验条件后,正式实验样本制备同预实验样本制备;
③ 正式实验按照预实验上机操作步骤进行。
五、结果计算:
1、按照样本质量计算:
酶活定义:每g组织每小时消耗1μmol NaOH 定义为一个酶活单位(U)。
PE 活性(U/g)=20×V2÷(V1÷V×W) ÷T×D =30×V2÷W×D
2、按照蛋白浓度计算:
酶活定义:每mg蛋白每小时消耗1μmol NaOH 定义为一个酶活单位(U)。
PE 活性(U/mg prot)=20×V2÷(V1÷V×Cpr)÷T×D =30×V2÷Cpr×D
3、按细菌/细胞密度计算:
酶活定义:每104个细菌或细胞每小时消耗1μmol NaOH 定义为一个酶活单位(U)。
PE 活性(U/104 cell)=20×V2÷(V1÷V×细胞数量)÷T×D =30×V2÷细胞数量×D
V1:加入离心管或试管中的上清液体积,1mL; V:提取液体积,1.5mL;
V2:滴定所消耗的试剂四的量,mL; T:反应时间,1h;
D:稀释倍数,未稀释即为1; W:样品质量,g;
细胞数量:以万计; Cpr:上清液蛋白质浓度(mg/mL)。
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