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一、产品简介:
样品可溶性蛋白质含量常常用于酶活性计算。此外,可溶性蛋白质含量也用于食品等质量分析。
蛋白质与福林酚试剂反应,生成深蓝色复合物。蓝色的深浅与蛋白质含量成正比。可用分光光度计或酶标仪于740nm波长下进行测定。与标准曲线对照,而确定蛋白质含量。
二、试剂盒组分与配制:
试剂名称 | 规格 | 保存要求 | 备注 |
提取液 | 液体100mL×1瓶 | 4℃保存 | |
试剂一A | 液体30mL×1瓶 | 4℃避光保存 | |
试剂一B | 液体0.6mL×1支 | 4℃避光保存 | |
试剂二 | 液体3mL×1瓶 | 4℃保存 | |
标准品 | 粉剂×1支 | 4℃保存 | 临用前加入1mL蒸馏水(即2mg/mL标准品母液),溶解后于-20℃保存,建议分装保存,避免反复冻融。 |
工作液的配制:临用前请根据拟用工作液体积(样本数×0.25mL),将试剂一A和试剂一B按照50:1的比例混合,盖紧后充分混匀。 |
三、需自备的仪器和用品:
酶标仪、96孔板、台式离心机、恒温水浴锅/培养箱、超声细胞破碎仪、研钵/匀浆器、天平、可调式移液器和蒸馏水。
四、操作步骤:
建议正式实验前选取2个样本做预测定,了解本批样品情况,熟悉实验流程,避免实验样本和试剂浪费!
1、预实验样本制备
① 组织样本:称取约0.1g样本,加入1mL提取液,冰浴匀浆后,12000rpm,4℃离心10min,取上清待测。【注】:若增加样本量,可按照组织质量(g):提取液体积(mL)为1:5~10的比例进行提取。
② 细菌或细胞样本:收集细菌或细胞到离心管内,离心后弃上清;建议 500 万细菌或细胞加入 1mL 提取液, 超声波破碎细菌或细胞(冰浴,功率 20%或 200W,超声 3s,间隔 10s,重复 30 次);12000rpm,4℃离心10min,取上清液待测。【注】:若增加样本量,可按照细胞数量(万):提取液体积(mL)为1:5~10的比例进行提取。
③ 液体样本:澄清无色液体样品可以直接测定。若浑浊,离心后取上清检测。
2、标准溶液的配制:把2mg/mL标准品母液用蒸馏水稀释成0.25mg/mL的标准溶液备用。
编号 | 稀释前浓度(mg/mL) | 稀释液体积(μL) | 标准液体积(μL) | 稀释后浓度 (mg/mL) |
S1 | 2 | 375 | 125 | 0.25 |
3、预实验上机操作:
① 酶标仪预热30min以上,调节波长至740nm。
② 操作表:
试剂名称(µL) | 测定管 | 标准管 | 空白管 |
样本 | 50 | - | - |
标准溶液 | - | 50 | - |
蒸馏水 | - | - | 50 |
工作液 | 250 | 250 | 250 |
试剂二 | 25 | 25 | 25 |
充分混匀后,于30℃水浴30min,吸取200μL反应液至96孔板,于740nm处读取吸光值A,分别记为A测定、A标准、A空白。 (注:空白管只需测定1-2次) |
4、正式实验:
① 若预实验A测定-A空白﹥0.4,需将样本用蒸馏水稀释后再测定,以确保测定的准确性;
② 确定好最适实验条件后,正式实验样本制备同预实验样本制备;
③ 正式实验按照预实验上机操作步骤进行(标准管和空白管预实验已做,正式实验可选做)。
五、结果计算:
1、按照样本质量计算:
Cpr (mg/g 质量)=C标准品×(A测定-A空白)÷(A标准-A空白)÷W×D
2、按照细胞数量计算:
Cpr (mg/104 cell)=C标准品×(A测定-A空白)÷(A标准-A空白)÷细胞数量×D
3、按照液体体积计算:
Cpr (mg/mL)=C标准品×(A测定-A空白)÷(A标准-A空白)×D
C标准品:标准溶液浓度,0.25mg/mL; V:提取液体积,1mL;
W:样本质量,g; D:稀释倍数,未稀释即为 1;
细胞数量:以万计。
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