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一、产品简介:
多种微生物、动物、植物等都可产生几丁质酶,高等植物本身不存在作为真菌细胞壁组分之一的几丁质,但当植物受到病原菌感染时,几丁质酶活性迅速提高。因此该酶与植物对病原微生物的抗性有关,是重要的病程相关蛋白。
几丁质酶主要水解几丁质多聚体中的β-1,4-糖苷键,依据水解口位置的不同可分为内切几丁质酶和外切几丁质酶。几丁质酶催化几丁质水解形成的产物为N-乙酰葡萄糖胺(Glc-NAcc)单体,产物在580nm处具有特征吸收峰,通过吸光值变化即可表征几丁质酶的活性。
二、试剂盒组分与配制:
试剂名称 | 规格 | 保存要求 | 备注 |
试剂一 | 自备 | 4℃保存 | 甲苯 |
试剂二 | 液体10mL×1瓶 | 4℃保存 | |
试剂三 | 液体20mL×1瓶 | 4℃避光保存 | |
试剂四 | 液体2.2mL×1瓶 | 4℃避光保存 | |
试剂五 | 液体22mL×1瓶 | 4℃避光保存 | |
标准品 | 粉剂×1支 | 4℃保存 | 加入1mL蒸馏水,充分溶解 (即1mg/mL标准品母液) |
三、需自备的仪器和用品:
酶标仪、96孔板、台式离心机、恒温水浴锅/培养箱、研钵、天平、可调式移液器、30~50目筛、甲苯、蒸馏水和冰。
四、操作步骤:
建议正式实验前选取2个样本做预测定,了解本批样品情况,熟悉实验流程,避免实验样本和试剂浪费!
1、预实验样本制备
新鲜土样风干,过30-50目筛。称取约0.1g土样,加入0.05mL试剂一,混匀,常温静置15min。静置结束后,加入0.2mL试剂二与0.4mL试剂三,37℃振荡反应24h,8000rpm,4℃离心10min(若离心后上清中仍有杂质,建议将上清再次离心,至澄清),取上清液置于冰上待测。
2、标准溶液的配制:把1mg/mL标准品母液用蒸馏水稀释成50μg/mL的标准溶液备用。
编号 | 稀释前浓度(mg/mL) | 稀释液体积(μL) | 标准液体积(μL) | 稀释后浓度 (μg/mL) |
S1 | 1 | 950 | 50 | 50 |
3、预实验上机操作:
① 酶标仪预热30min以上,调节波长至580nm。
② 操作表:
试剂名称(µL) | 测定管 | 对照管 | 标准管 | 空白管 |
上清 | 100 | 100 | - | - |
标准溶液 | - | - | 100 | - |
蒸馏水 | - | - | - | 100 |
试剂四 | 20 | 20 | 20 | 20 |
测定管、标准管、空白管沸水浴处理5min,迅速冷却至室温;对照管常温静置5min。 | ||||
试剂五 | 200 | 200 | 200 | 200 |
充分混匀,37℃反应20min,冷却至室温后于580nm处读取吸光值A,分别记为A测定、A对照、A标准、A空白。计算∆A测定=A测定-A对照,∆A标准=A标准-A空白。(注:空白管只需测定1-2次,每个样品均需设一个对照管) |
4、正式实验:
① 若预实验测定吸光值超出标准吸光值线性范围:高于最高值建议将样本适当稀释后再进行测定,并将改变后的D代入公式计算;
② 确定好最适实验条件后,正式实验样本制备同预实验样本制备;
③ 正式实验按照预实验上机操作步骤进行(标准管和空白管预实验已做,正式实验可选做)。
五、结果计算:
酶活性定义:37℃条件下,每g土壤每天分解几丁质产生1μgN-乙酰氨基葡萄糖的酶量为一个酶活性单位(U)。
土壤几丁质酶活性(U/g土样)=(ΔA测定÷ΔA标准×C 标)×V÷W÷T
=32.5×ΔA测定÷ΔA标准÷W
C标:标准管的浓度,50μg/mL; V:样本处理总体积,0.65mL;
W:样本质量,g; T:反应时间,1d。
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GMT+8, 2024-11-13 09:07
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