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一、产品简介:
土壤β-葡萄糖苷酶(Solid-β-Glucosidase,S-β-GC)能够催化水解芳基或烃基与糖基原子团之间的糖苷键生成葡萄糖,是纤维素分解酶系中重要组成成分之一,在土壤微生物的糖类代谢方面具有重要生理功能。
土壤β-葡萄糖苷酶能够催化对-硝基苯-β-D吡喃葡萄糖苷生成黄色物质对-硝基苯酚(PNP),该物质在400nm有特征光吸收,进而得到土壤β-葡萄糖苷酶的活性。
二、试剂盒组分与配制:
试剂名称 | 规格 | 保存要求 | 备注 |
试剂一 | 自备 | 4℃保存 | 甲苯 |
试剂二 | 粉剂×1瓶 | -20℃保存 | 临用前加入7mL试剂三,充分溶解待用,用不完的试剂仍-20℃保存。 |
试剂三 | 液体25mL×1瓶 | 4℃保存 | |
试剂四 | 液体15mL×1瓶 | 4℃保存 | |
标准品 | 液体1mL×1支 | 4℃避光保存 | 10mmol/L标准品母液 |
三、需自备的仪器和用品:
酶标仪、96孔板、台式离心机、恒温水浴锅/培养箱、研钵、天平、可调式移液器、30-50目筛、甲苯和蒸馏水。
四、操作步骤:
建议正式实验前选取2个样本做预测定,了解本批样品情况,熟悉实验流程,避免实验样本和试剂浪费!
1、预实验样本制备
新鲜土样自然风干或37℃烘箱风干,过30-50目筛。
【注】:土壤风干,减少土壤中水分对于实验的干扰;
2、标准溶液的配制:把10mmol/L(=10000μmol/L)标准品母液用蒸馏水稀释成300、200、100、50、25、12.5μmol/L的标准溶液备用。
编号 | 稀释前浓度(μmol/L) | 稀释液体积(μL) | 标准液体积(μL) | 稀释后浓度 (μmol/L) |
Sx | 10000 | 900 | 100 | 1000 |
S1 | 1000 | 140 | 60 | 300 |
S2 | 1000 | 360 | 80 | 200 |
S3 | 200 | 200 | 200 | 100 |
S4 | 100 | 200 | 200 | 50 |
S5 | 50 | 200 | 200 | 25 |
S6 | 25 | 200 | 200 | 12.5 |
3、预实验上机操作:
① 酶标仪预热30min以上,调节波长至400nm。
② 操作表:
试剂名称(μL) | 测定管 | 对照管 | 标准管 | 空白管 |
土样(g) | 0.02 | 0.02 | - | - |
试剂一 | 10 | 10 | - | - |
室温振荡混匀15min | 90℃振荡混匀15min | - | ||
试剂二 | 130 | - | - | - |
蒸馏水 | - | 130 | - | - |
试剂三 | 160 | 160 | - | - |
充分混匀,放入37℃水浴锅或恒温培养箱中孵育1h后,立即沸水浴煮沸5min(可用封口膜缠紧,防止水分散失),流水冷却,10000g,25℃离心10min,取上清液。 | ||||
上清液 | 70 | 70 | - | - |
标准溶液 | - | - | 70 | - |
蒸馏水 | - | - | - | 70 |
试剂四 | 130 | 130 | 130 | 130 |
充分混匀,12000rpm,25℃离心10min,取180μL反应液至96孔板中,于400nm处读取吸光值A,分别记为A测定、A对照、A标准、A空白。计算ΔA测定=A测定-A对照,∆A标准=A标准-A空白。(注:每个样本需做一个自身对照,空白管只需做1-2次) |
4、正式实验:
① 若预实验测定吸光值超出标准吸光值线性范围:高于最高值建议将上清液用蒸馏水适当稀释后再进行测定,低于最低值建议适当增加样本质量W或延长孵育时间T后再进行测定,并将改变后的D、W和T代入公式计算;
② 确定好最适实验条件后,正式实验样本制备同预实验样本制备;
③ 正式实验按照预实验上机操作步骤进行(标准管和空白管预实验已做,正式实验可选做)。
五、结果计算:
1、以各个标准溶液的浓度为x轴,其对应的ΔA标准为y轴,绘制标准曲线,得到标准方程y=kx+b,将ΔA测定带入方程得到x(μmol/L)。
2、S-β-GC活力计算:
单位定义:每天每g土样中产生1μmol对-硝基苯酚(PNP)定义为一个酶活力单位。
S-β-GC活力(U/g土样)=x×V÷W÷T×D=0.0072×x÷W×D
V:反应总体积,3×10-4L; T:反应时间,1h=1/24d;
W:土壤样本实际取样量,g; D:稀释倍数,未稀释即为1。
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GMT+8, 2024-12-22 09:50
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