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生长因子-10(FGF-10)是FGF-7亚家族的核心旁分泌信号分子,通过与上皮限制性受体FGFR2b/FGFR1b结合,驱动动物体内的组织发育、干细胞稳态及损伤后上皮再生。利用DNA重组技术表达的FGF-10(Recombinant Human FGF-10/KGF-2,AbMole,M10353)已成为类器官及干细胞培养、细胞和动物实验的关键生物活性分子。
一、FGF-10(KGF-2)的作用机理
FGF-10(成纤维细胞生长因子-10,AbMole,M10353)主要通过与其受体FGFR2b结合发挥生物学效应。FGFR2b是受体酪氨酸激酶家族成员 FGFR2 的一种同源异构体,在细胞膜上表达。其外细胞域包含三个免疫球蛋白样亚单位(D1、D2 和 D3),是 FGF的结合位点。D1和D2主要负责与FGF配体的初始结合,D3则通过与肝素样糖胺聚糖相互作用,增强 FGF 配体与受体的结合亲和力。当FGF-10与FGFR2b结合后,会引发受体的二聚化,进而激活细胞内酪氨酸激酶结构域,使受体发生自磷酸化,触发一系列下游信号通路的激活,如MAPK/ERK、PI3K/AKT等,这些信号通路在调控细胞的增殖、分化、迁移和存活等方面发挥着关键作用[1]。
图 1. FGF10的作用机理[1]
二、FGF-10(重组成纤维细胞生长因子-10)的科研应用
1. FGF-10(KGF-2)用于类器官和干细胞的培养综述
类器官作为模拟体内器官结构与功能的三维培养模型,它的形成高度依赖细胞外信号分子的调控,而 FGF-10(成纤维细胞生长因子-10,AbMole,M10353)凭借其对细胞增殖、分化及形态发生的特异性调控能力,成为多种类器官培养体系中的关键因子。例如,FGF-10是肺类器官培养基中的重要组分之一。有文献报导,在非粘附条件下,FGF-10的信号传导促进肺上皮干细胞/祖细胞 (LSPC) 形成肺球。微结构和免疫组织化学分析表明,FGF-10处理的LSPC 产生更多分化的肺细胞后代;而在3D细胞外基质中,FGF10 和FGF2(bFGF)、FGF7(KGF-7)、FGF9 的联合使用可有效促进肺类器官的形成。
进一步研究发现FGF 在促进不同的肺上皮细胞类型方面表现出差异,其中FGF9负责诱导近端气道细胞的分化,包括纤毛细胞和基底细胞。FGF7和FGF10则与远端肺谱系的分化密切相关[2]。FGF-10还可用于胃类器官的培养,FGF10 (100 ng/ml)、Gastrin I(10 nM)、EGF(50 ng/mL)、R-spondin1 、Noggin的组合是胃类器官培养的经典方案[3]。此外,在肠类器官培养中,FGF-10与Wnt3a、Noggin的组合使用,可显著提高肠隐窝-绒毛结构的形成效率[4]。
图 2. FGF促进肺类器官的形成、增殖和分化[2]
干细胞的体外培养同样需要细胞因子以维持其增殖与分化的平衡,FGF-10 (成纤维细胞生长因子-10,AbMole,M10353) 通过与受体结合及其下游信号通路的激活,在多种干细胞类型的培养中展现出独特的调控功能。在间充质干细胞(Mesenchymal stem cell,MSCs)培养中,FGF-10 可显著增进细胞的增殖速率,同时抑制其自发分化。体外实验表明,添加 FGF-10 的 MSCs 在连续传代过程中能更好地维持干细胞标志物(如 CD44、CD90)的表达,且核型稳定性更高。
机制上,FGF-10通过激活 MAPK/ERK 信号通路促进 Cyclin D1 的表达,加速细胞周期进程,同时通过下调Runx2等成骨分化相关的转录因子,维持 MSCs 的未分化状态。这一特性使 FGF-10 成为 MSCs 大规模扩增培养中的重要添加因子,为干细胞的基础研究与应用提供了充足的细胞来源[5]。FGF(KGF-2)在低浓度(如10 ng/mL)的情况下,可促进干细胞的增殖和参与干性维持[6]。而在较高的浓度下(如100 ng/ml),则可以诱导细胞的分化。例如FGF-10(100 ng/ml)以时间和浓度依赖性方式诱导小鼠iPS细胞分化为心肌细胞谱系[7]。
图 3. FGF-10 增强心肌细胞分化[7]
2. FGF-10在动物实验中的应用
FGF-10(KGF-2,AbMole,M10353) 在动物模型的研究中也有着广泛的应用。例如在博来霉素(Bleomycin,2μg/g)诱导的小鼠肺纤维化模型中,C57BL/6小鼠在造模后的第0、7、14、21天气管内滴注FGF-10(0.05 μg/g),可显著减少肺泡2型细胞(AT2)的损伤,并促进肺泡祖细胞(IAAP)的增殖[8]。在BPD-PH(支气管肺发育不良相关的肺高压)小鼠模型中,给予FGF-10可有助于肺组织再生[9]。
此外,含有FGF-10的脂质体(50 μg/mL)在C57BL/6雄性小鼠脱发模型中可以激活毛囊干细胞,结果显示18天后毛发长度与密度均优于空白脂质体组,组织学显示毛囊处于生长期Ⅲ-Ⅳ[10]。FGF-10(重组KGF-2)在坐骨神经损伤(SNI)的大鼠模型中,鞘内注射可剂量依赖性缓解痛觉过敏,并抑制脊髓背角小胶质细胞的活化。其机制可能与抑制NFκB磷酸化及PPARγ通路激活有关[11]。
图 4. FGF10促进肺泡上皮祖细胞增殖和肺泡修复[8]
参考文献及鸣谢
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[9] C. M. Chao, L. Chong, X. Chu, et al., Targeting Bronchopulmonary Dysplasia-Associated Pulmonary Hypertension (BPD-PH): Potential Role of the FGF Signaling Pathway in the Development of the Pulmonary Vascular System, Cells 9(8) (2020).
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